بررسی ﻣﻘﺎوﻣﺖ آﻧﺘﯽ‌ﺑﯿﻮﺗﯿﮑﯽ جدایه‌های کلبسیلاپنومونیه به‌دست آمده از ﻧﻤﻮﻧﻪ‌ﻫﺎی ﺑﺎلینی بیمارستان خاتم‌الانبیاء (ص) زاهدان

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان

1 کارشناس ارشد ژنتیک، اداره آموزش و پرورش زابل

2 کارشناس ارشد ژنتیک، بیمارستان سیدالشهدا زهک

3 استادیار گروه میکروب شناسی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی زابل

10.35066/J040.2018.192

چکیده

کلبسیلاپنومونیه ازجمله باکتری‌های عامل عفونت ادراری و یکی از پاتوژن‌های فرصت طلب و عامل عفونت بیمارستانی محسوب می‌گردد. شیوع مقاومت دارویی کلبسیلا پنومونیه روز‌ به ‌روز رو به افزایش است و بنابراین انجام تست‌های مقاومت دارویی، قبل از تجویز آنتی‌بیوتیک، ضروری به نظر می‌رسد.  هدف این مطالعه تعیین میزان مقاومت به برخی از آنتی‌بیوتیک‌ها در ایزوله‌های کلبسیلا پنومونیه جدا شده از نمونه‌های بالینی بیماران بیمارستان خاتم الانبیاء (ص) زاهدان طی سالهای 1391 تا 1392 با استفاده از روش انتشار دیسک بود. در ﻣﻄﺎﻟﻌﻪ ﺗﻮﺻﯿﻔﯽ- ﺗﺤﻠﯿﻠﯽ ﺣﺎﺿر، تعداد 83 جدایه ی کلبسیلاپنومونیه از ﻧﻤﻮﻧﻪ‌ﻫﺎی ﻣﺨﺘﻠﻒ ﺑﺎﻟﯿﻨﯽ در بیمارستان خاتم جداسازی و ﺑﺎ اﺳﺘﻔﺎده از آزﻣﻮن‌های ﺑﯿﻮﺷﯿﻤﯿﺎﯾﯽ ﺗﻌﯿﯿﻦ ﻫﻮﯾﺖ ﺷﺪﻧﺪ. اﻟﮕﻮی ﻣﻘﺎوﻣﺖ آﻧﺘﯽ ﻣﯿﮑﺮوﺑﯽ ﺑﻪ روش انتشار دیسک (ﮐﺮﺑـﯽ- بائر) اﻧﺠـﺎم ﮔﺮﻓـﺖ. درصد مقاومت ایزوله‌های کلبسیلاپنومونیه نسبت به سفیکسیم 82 درصد، سفوتاکسیم 81 درصد، سفتریاکسون 73 درصد، سفتازیدیم 72 درصد، آمیکاسین 63%63 درصد، آزیترومایسین60 درصد، تتراسیکلین و نالیدیکسیک اسید 59 درصد، جنتامسین 58 درصد و ایمی‌پنم 43 درصد تعیین گردید. نتایج به‌دست آمده نشان داد که ایمی‌پنم با کمترین درصد مقاومت در مقابل تمام ایزوله‌های کلبسیلا پنومونیه، موثرترین آنتی‌بیوتیک بوده است.

کلیدواژه‌ها


عنوان مقاله [English]

Antibiotic resistance survey of Klebsiella pneumonia isolates collected from clinical specimens in Khatam (PBUH) Hospital, Zahedan

نویسندگان [English]

  • Bahman Hormozi 1
  • Mahboubeh Barekzaei 2
  • Zahra Rasheki Ghalehnoo 3
چکیده [English]

Klebsiella pneumoniae is the one of UTI bacteria and relevant opportunistic pathogen that causes nosocomial infections. Antibiotic resistance of the Klebsiella species is increasing nowadays; therefore, antibiogram test is necessary before prescribing antibiotics. This research is aimed to determine the rate of antibiotics resistance of Klebsiella pneumoniae isolated from clinical specimens of patients referred to Khatam hospital during September 2013 to May 2014 using Kirby-Bauer method. This descriptive and analytic surveywas performed on 83 isolates of Klebsiella pneumonia collected from Khatam hospital. After phenotypical and biochemicalidentification of isolate, drug resistance was investigated for 10 antibiotics through the standard CLSI procedure via the Kirby-Bauer method. The percentage of resistance to all of the isolates of Klebsiela pneumonia were Cefexime 82%٫ Cefotaxime 81%٫ Ceftriaxone 73%٫ Ceftazidime 72%٫ Amikacin 63%٫ Azithromycin 60%٫ Tetracycline and Nalidixic Acid 59%٫ Gentamicin 58% and Imipenem 43%. The results indicated that the lowest resistance percent was for Imipenem in all tested Klebsiella; therefore, it can be recommended as the most effective antibiotic for Klebsiella isolates in study area.

کلیدواژه‌ها [English]

  • Disk diffusion
  • Zahedan
  • Klebsiella pneumonia
  • Antibiotics resistance
  1. Escudero E, Vinue L ,Teshager T, Torres C, Moreno MA. Resistance mechanisms and farm-level distribution of fecal Escherichia coli isolates resistant to extended-spectrum cephalosporins in pigs in Spain. Res Vet Sci. 2010; 88(1):83-7.
  2. Lye DC, Kwa AL, Chlebicki P. World Health Day: antimicrobial resistance and practical solutions. Ann Acad Med 2011; 40(4):156-52.
  3. Yong D, Toleman MA, Giske CG, Cho HS, Sundman K, Lee K, et al. Characterization of a new metallo-beta-lactamase gene, bla (NDM-1), and a novel erythromycin esterase gene carried on a unique genetic structure in Klebsiella pneumonia sequence type 14 from India. Antimicrob Agents Chemother. 2009; 53(12):5046-54.
  4. Mendonc N, Manageiro V, Robin F, Salgado MJ, Ferreira E, Canic M. The lys234Arg substitution in the enzyme SHV-72 is a determination for resistance to clavulanic acid inhibition. Antimicrob Agents Chemother. 2008; 52(5):1806-11.
  5. Walsh TR, Toleman MA. The Emergence of pan-resistant gram-negative pathogens merits a rapid global political response. J Antimicrob Chemother. 2012; 67:1-3.
  6. Bano RJ, Picon E, Gijon P, Hernandes JR, Cisnero S, Pena C et al..Risk factor and prognosis of nosocomial blood stream infections caused by extended-spectrum Blactamase producing coli .J Clin Microbiol. 2010; 48(5):1726-1731.
  7. Gould FK, Brindle R, Chadwic PR, Fraise AP, Hill D, Nathwani D, et al. Guidelines for the prophylaxis and treatment of methicillin resistant Staphylococcus aureus (MRSA) infections in the UK. J antimicrob chemother. 2009; 63(5):849-861.
  8. Hiramatsu K. Vancomycin resistant Staphylococcus aureus: a new model of antibiotic resistance. lancet infect dis. 2001;1(3):618-623.
  9. Lowly FD. Antimicrobial resistance; the example of Staphylococcus aureus. J clin invest. 2003; 111 (9):1265-1273.
  10. Washington C, Stephen A, Janda W, et al. Koneman's color atlas and textbook of diagnostic microbiology. 6th USA: Lippincott Wiiliams & Wilkins. 2006:775-9.
  11. Al-Zarouni M, Senok A, Rashid F, Al-Jesmi SM, Panigrahi D. Prevalence and antimicrobial susceptibility pattern of extended-spectrum beta-lactamase-producing Enterobacteriaceae in the United Arab Emirates. Med Princ Pract. 2008; 17(1):32-6.
  12. Gangoue PJ, Koulla ShS, Ngassam P, Adiogo D, Ndumbe P. Antimicrobial activity against gram negative bacilli from Yaounde Central Hospital, Cameroon. Afr Health Sci. 2006; 6(4):232-35
  13. Patel JB, Weinstein MP, Eliopoulos JM, Jenkins SJ, Lewis II JS, Limbago B, et al. Clinical and Laboratory Standards Institute. Performans Standards for Antimicrobial Susceptibility Institute, Pennsylvania, USA, 2017.
  14. Marty l, Jarlier V. Surveillance of multiresistant bacteria: justification, role of the laboratory, indicators, and recent French data. Progress en Urlogie.1999; 9:41-49.
  15. Bhullar K, Waglechner N, Pawlowski A, Koteva K, Banks ED, Johnston MD, et al. Antibiotic resistance is prevalent in an isolated cave microbiome. PLoS One. 2012; 7(4):e34953.
  16. Rabani Z, Mardaneh J. Emergence of Multidrug-Resistant Pseudomonas aeruginosa: Detection of Isolates harboring blaCTX gene causing infections in hospital and determination of their susceptibility to antibiotics. Armaghane danesh. 2015; 20(8):689-705.
  17. D'Costa VM, King CE, Kalan L, Morar M, Sung WW, Schwarz C, et al. Antibiotic resistance is ancient. Nature. 2011; 477(7365):457-461.
  18. Hernández J, Stedt J, Bonnedahl J, Molin Y, Drobni M, Calisto-Ulloa N, et al. Human-associated extended-spectrum β-lactamase in the Antarctic. Appl Environ Microbiol. 2012; 78(6):2056-8.
  19. Gholipour A, Soleimani N, Shokri D, Mobasherizadeh S, Kardi M, Baradaran A. Phenotypic and Molecular Characterization of Extended-Spectrum beta-Lactamase Produced by Escherichia coli, and Klebsiella pneumoniae Isolates in an Educational Hospital. Jundishapur J 2014; 7(10): e11758.
  20. Eftekhar F, Rastegar M, Golalipoor M, Mansoursamaei N. Detection of extended spectrum B-lactamases in urinary isolates of Klebsiella pneumoniae in relation to Bla, Bla and Bla Gene Iran J Public Health. 2012; 41(3):127-32.
  21. Molana Z, Ferdosi Shahandashti E, Gharavi S, Shafii M, Norkhomami S, Ahangarkani F, et al. Molecular Investigation of Class I Integron in Klebsiella Pneumoniae Isolated from Intensive Care Unit (Shahid Beheshti Hospital of Babol; 2010). J Babol Univ Med Sci. 2011; 13(6):7-13. [In Persian]
  22. Saeidi S, Ghamgosha M, Ali Taheri R, Shiri Y, Solouki M, Hassanpour K, et al. Phenotypic and genotypic detection of extended-spectrum β-lactamase producing Escherichia coli isolated from urinary tract infections in Zabol. J Coast Life Med. 2014; 2(9):732-7.
  23. Saeidi S, Ghamgosha M, Ali Taheri R, Shiri Y, Solouki M, Hassanpour K, et al. Phenotypic and genotypic detection of extended-spectrum β-lactamase producing Escherichia coli isolated from urinary tract infections in Zabol. J Coast Life Med. 2014; 2(9):732-7.