بررسی فنوتیپی مقاومت آنتی‌بیوتیکی در جدایه‌های کورینه باکتریوم سودو‌توبرکلوزیس جدا شده از گوسفندان مبتلا به لنفادنیت پنیری شهرستان بینالود مشهد

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان

1 دانش‌آموخته‌ی کارشناسی ارشد بیوشیمی، دانشکده علوم، دانشگاه پیام نور مشهد، مشهد، ایران

2 استادیار موسسه تحقیقات واکسن و سرم‌سازی رازی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، شعبه مشهد، ایران

چکیده

لنفادنیت پنیری یک بیماری عفونی پوستی بسیار شایع در بین گوسفندان و بزها در سراسر جهان است که عامل این بیماری باکتری کورینه باکتریوم پسودوتوبرکلوزیس است. ایجاد این بیماری در بین دام‌ها همواره ضررهای اقتصادی چشمگیری به همراه دارد. در این مطالعه تعداد 40 نمونه از آبسه‌های موجود در موارد دام زنده و لاشه‌های کشتارگاه دام در شهرستان مشهد و بینالود مورد بررسی قرار گرفت. جهت نمونه‌گیری از عقده‌های لنفاوی دارای تورم و چرک، به وسیله سرنگ نمونه از داخل غدد متورم به مقدار حدود 1 سی‌سی جمع‌آوری شد و سرنگ حاوی نمونه در کنار یخ به آزمایشگاه انتقال داده شد. نمونه‌های جمع‌آوری شده به محیط کشت BHI براث انتقال داده شدند و پس از تأیید توسط تست‌هایی از قبیل رنگ‌آمیزی گرم ، تست کاتالاز و تشخیص از روی پرگنه باکتری، دیسک‌گذاری جهت تعیین میزان مقاومت و حساسیت جدایه‌ها به روش کربی بائر انجام شد. بررسی تعیین میزان حساسیت و مقاومت در جدایه‌های مورد مطالعه نشان داد که بیشترین میزان مقاومت جدایه‌ها نسبت به آنتی‌بیوتیک داکسی سایکلین (5/72 درصد) بود و کمترین میزان مقاومت نسبت به آنتی‌بیوتیک‌های سولفامتوکسازول تری‌متوپریم (5/17 درصد) بود. روش دیسک دیفیوژن آگار می‌تواند به عنوان یک روش غربالگری اولیه و ابتدایی جهت تعیین میزان مقاومت و حساسیت استفاده گردد لذا برای بررسی دقیق میزان مقاومت جدایه‌ها می‌توان از روش ژنوتیپی استفاده کرد.

کلیدواژه‌ها


عنوان مقاله [English]

Antibiotic resistance phenotype study in Corinne bacterium pseudotuber-culosis isolates isolated from sheep with cheese lymphadenitis in Binalood city of Mashhad

نویسندگان [English]

  • Reza Mohamadzadeh 1
  • Hamidreza Farzin 2
  • Majid Jamshidian-Mojaver 2
1 Graduate of Biochemistry, Faculty of Science, Payame Noor University of Mashhad, Mashhad, Iran
2 Assistant Professor-Mashhad Branch, Razi Vaccine and Serum Research Institute, Agricultural Research, Education and Extension Organization (AREEO), Mashhad, Iran
چکیده [English]

Cheese lymphadenitis is a very common skin infectious disease among sheep and goats around the world caused by the bacterium Corinne bacterium Pseudotuberculosis. The development of this disease among livestock always causes significant economic losses. In this study, 40 samples of abscesses in live animal cases and carcasses of animal slaughterhouses in Mashhad and Binalood were examined. To sample swollen and purulent lymph nodes, a sample of about 1 cc was collected from the swollen glands by a sample syringe and the sample containing the sample was transferred to the laboratory along with ice. The collected samples were transferred to BHI culture medium and after confirmation by tests such as hot staining, catalase test and detection from bacterial strain, discing was performed to determine the resistance and sensitivity of the isolates by Kirby Baer method. Examination of the sensitivity and resistance of the studied isolates showed that the highest resistance of the isolates to Doxycycline antibiotics (72/5%) and the lowest resistance to Trimethoprim/Sulfamethoxazole antibiotics (17.5%). Also, in the study of the sensitivity of isolates, the highest sensitivity of isolates to antibiotics was enrofloxacin and the lowest was Chloramphenicol. The agar diffusion disc method can be used as a primary and primary screening method to determine the level of resistance and sensitivity, so a genotypic method can be used to accurately assess the resistance of the isolates.
 
 
 






کلیدواژه‌ها [English]

  • Antibiotic resistance
  • caseous lymphadenitis
  • Corinne bacterium pseudotuberculosis
1- Rebouças MF, Portela RW, Lima DD, Loureiro D, Bastos BL, Moura-Costa LF, Vale VL, Miyoshi A, Azevedo V, Meyer R. Corynebacterium pseudotuberculosis secreted antigen-induced specific gamma-interferon production by peripheral blood leukocytes: potential diagnostic marker for caseous lymphadenitis in sheep and goats. Journal of veterinary diagnostic investigation. 2011; 23(2): 213-20.
2- Rizk AM, El-Tawab A, Awad A, AFIFI SE, Mohamed SR. Corynebacterium pseudotuberculosis infection in small ruminant and molecular study of virulence and resistance genes in Beni-Suef Governorate. Benha Veterinary Medical Journal. 2019; 37(1):122-7.
3- Hussain SA, Ali M, Turkar S, Hassan N, Rais-ul-Islam M, Dar LM. Caseous lymphadenitis in goats: First report of two clinical cases from Punjab (India). Microbiologia. 2013; 39: 44-6.
4- Arsenault J, Girard C, Dubreuil P, Daignault D, Galarneau JR, Boisclair J, Simard C, Bélanger D. Prevalence of and carcass condemnation from maedi–visna, paratuberculosis and caseous lymphadenitis in culled sheep from Quebec, Canada. Preventive veterinary medicine. 2003; 59(1-2): 67-81.
5- Baird GJ, Fontaine MC. Corynebacterium pseudotuberculosis and its role in ovine caseous lymphadenitis. Journal of comparative pathology. 2007; 137(4): 179-210.
6- Radostits OM, Gay CC, Hinchcliff KW, Constable PD. A textbook of the diseases of cattle, horses, sheep, pigs and goats. Veterinary medicine. 2007; 10: 2045-50.
7- Quinn PJ, Markey BK, Leonard FC, Hartigan P, Fanning S, Fitzpatrick E. Veterinary microbiology and microbial disease. John Wiley & Sons; 2011 Oct 7.
8- Bennett JE, Dolin R, Blaser MJ. Mandell, douglas, and bennett's principles and practice of infectious diseases: 2-volume set. Elsevier Health Sciences; 2014 Aug 28.
9- Davis MA, Besser TE, Orfe LH, Baker KN, Lanier AS, Broschat SL, New D, Call DR. Genotypic-phenotypic discrepancies between antibiotic resistance characteristics of Escherichia coli isolates from calves in management settings with high and low antibiotic use. Applied and environmental microbiology. 2011; 77(10): 3293-9.
10- Carroll KC, Butel J, Morse S. Jawetz Melnick & Adelbergs Medical Microbiology 27 E. McGraw Hill Professional; 2015 Aug 12.
11- Amiri M, Farzin H, Jamshidian-Mojaver M. Phenotypic and Genotypic Study of Antibiotic Resistance among Escherichia coli Isolates from Human Urinary Infection Cases in Bojnord Province. Avicenna Journal of Clinical Medicine. 2019; 26(3): 173-80.
12- Lee JC, Oh JY, Cho JW, Park JC, Kim JM, Seol SY, Cho DT. The prevalence of trimethoprim-resistance-conferring dihydrofolate reductase genes in urinary isolates of Escherichia coli in Korea. Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 2001; 47(5): 599-604.
13- Jones RN, Stilwell MG, Wilson ML, Mendes RE. Contemporary tetracycline susceptibility testing: doxycycline MIC methods and interpretive criteria (CLSI and EUCAST) performance when testing Gram-positive pathogens. Diagnostic microbiology and infectious disease. 2013; 76(1): 69-72.
14- European Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing. (2015). European Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing Breakpoint tables for interpretation of MICs and zone diameters European Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing Breakpoint tables for interpretation of MICs and zone diameters.
15- Sariadji K, Sunarno S, Puspandari N, Sembiring M. Antibiotic susceptibility pattern of Corynebacterium diphtheriae isolated from outbreaks in Indonesia 2010-2015. The Indonesian Biomedical Journal. 2018; 10(1): 51-58.
16- Viana MV, Figueiredo H, Ramos R, Guimaraes LC, Pereira FL, Dorella FA, Selim SA, Salaheldean M, Silva A, Wattam AR, Azevedo V. Comparative genomic analysis between Corynebacterium pseudotuberculosis strains isolated from buffalo. PLoS One. 2017; 12(4):e0176347.
17- Robaj AV, Hamidi A, Bytyqi HY, Sylejmani D. Frequency and antimicrobial susceptibility of bacterial isolates from caseous lymphadenitis in sheep in Kosovo. Bulgarian J Agri Sci. 2017; 23(6): 1033-6.
18- Rizk AM, El-Tawab A, Awad A, AFIFI SE, Mohamed SR. Corynebacterium pseudotuberculosis infection in small ruminant and molecular study of virulence and resistance genes in Beni-Suef Governorate. Benha Veterinary Medical Journal. 2019; 37(1): 122-7.
19- Li H, Yang H, Zhou Z, Li X, Yi W, Xu Y, Wang Z, Hu S. Isolation, antibiotic resistance, virulence traits and phylogenetic analysis of Corynebacterium pseudotuberculosis from goats in southwestern China. Small Ruminant Research. 2018; 168: 69-75.