تازه ها در میکروب شناسی دامپزشکی

تازه ها در میکروب شناسی دامپزشکی

بررسی مقطعی فراوانی ویروس لوکوز گاوی(BLV) در استان سیستان و بلوچستان به روش PCR

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان
1 دانش‌آموخته، گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه زابل، زابل، ایران
2 استادیار، گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه زابل، زابل، ایران
3 دانشیار، گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه زابل، زابل، ایران
چکیده
ویروس لوکوز گاوی با آلوده‌سازی و استقرار در لنفوسیت‌های B ، سیستم رتیکولواندوتلیال را درگیر کرده و در ارگان‌های مختلف علائم بالینی متفاوتی ایجاد می‌کند، در شرایط طبیعی، گاو تنها میزبان اصلی و مخزن بیماری است و به‌طور عمودی و افقی به این ویروس آلوده می‌شود، گوسفند و بز به‌طور تجربی به این ویروس آلوده می‌شوند. با توجه به عدم وجود اطلاعات کافی در خصوص میزان آلودگی و نحوه گردش ویروس BLV در استان سیستان و بلوچستان، مطالعه حاضر طراحی گردید. در این مطالعه توصیفی، تعداد 51 رأس دام (15 رأس گاو، 20 رأس گوسفند و 16 رأس بز) به‌صورت تصادفی از شهرستان‌های مختلف استان با ایجاد پراکندگی مناسب، انتخاب و نمونه‌های خون جمع‌آوری گردید. پس از جداسازی لایه بافی‌کوت، و استخراج RNA و سنتز cDNA ، با استفاده از تکنیک PCR و پرایمرهای اختصاصی طراحی شده برای ژن env ویروس، به تکثیر قطعه هدف از RNA ویروسی در نمونه‌ها اقدام شد. در این مطالعه داده‌های مربوط به سن، جنس، نژاد، تعداد زایش و شرایط نگهداری دام‌ها جمع‌آوری و به‌منظور بررسی ارتباط آنها با آلودگی به ویروس، مورد تحلیل آماری قرار گرفت. بر اساس نتایج حاصل از این مطالعه 3/13 درصد از گاوهای مورد بررسی آلوده به ویروس لوکوز گاوی بودند. در حالی که در نمونه‌های گوسفند و بز هیچ مورد مثبتی مشاهده نشد. بر اساس مطالعه حاضر ویروس لوکوز در جمعیت گاوان سیستان و بلوچستان وجود دارد لذا باید در تدابیر کنترلی و پیشگیرانه برای جلوگیری از گسترش بیماری مد نظر قرار گیرد.
کلیدواژه‌ها

موضوعات


عنوان مقاله English

Prevalence and Transmission Patterns of Bovine Leukemia Virus (BLV) in the Livestock Population of Sistan and Baluchestan Province: Risk Assessment and Control Strategies

نویسندگان English

Ebrahim Booya 1
Ali Sarani 2
Mehdi Rasekh 3
1 Post graduate student, Department of clinical science, Faculty of veterinary medicine, University of zabol, zabol, Iran
2 Assistant professor, Department of clinical science, Faculty of veterinary medicine, University of zabol, zabol, Iran
3 Associate professor, Department of clinical science, Faculty of veterinary medicine, University of zabol, zabol, Iran
چکیده English

Bovine Leukemia Virus (BLV) infects and resides in B lymphocytes, engaging the reticuloendothelial system and causing various clinical signs in different organs. Under natural conditions, cattle are the primary host and reservoir of the disease, and can be infected both vertically and horizontally. Sheep and goats can be experimentally infected with this virus. Given the lack of sufficient information regarding the prevalence and circulation of BLV in Sistan and Baluchestan province, this study was designed. In this descriptive study, 51 heads of livestock (15 cows, 20 sheep, and 16 goats) were randomly selected from different counties of the province with appropriate distribution, and blood samples were collected. After separating the buffy coat layer and extracting RNA and synthesizing cDNA, using the PCR technique and specific primers designed for the viral env gene, the target fragment of the viral RNA was amplified in the samples. In this study, data related to the age, sex, breed, number of parities, and husbandry conditions of the animals were collected and analyzed statistically to investigate their relationship with viral infection. According to the results of this study, 13.3% of the cows examined were infected with BLV, while no positive cases were observed in sheep and goat samples. Based on this study, BLV exists in the cattle population of Sistan and Baluchestan, therefore, it should be considered in control and preventive measures to prevent the spread of the disease.

کلیدواژه‌ها English

BLV virus
env Gen
sheep and goats
PCR
1- Johnson R, Kaneene J. Bovine leukemia virus. Part I. Descriptive epidemiology, clinical manifestations, and diagnostic tests. 1991.
2- Gillet N, Florins A, Boxus M, Burteau C, Nigro A, Vandermeers F, et al. Mechanisms of leukemogenesis induced by bovine leukemia virus: prospects for novel anti-retroviral therapies in human. Retrovirol. 2007; 4: 18.
3- Gatot JS, Callebaut I, Van Lint C, Demonté D, Kerkhofs P, Portetelle D, et al. Bovine leukemia virus SU protein interacts with zinc, and mutations within two interacting regions differently affect viral fusion and infectivity in vivo. J Virol. 2002; 76(16): 7956-67.
4- Rukkwamsuk T, Rungruang S. Seroprevalence of bovine leukemia virus (BLV) infection in pregnant replacement dairy heifers in Saraburi Province, Thailand. Agric Nat Resour. 2008; 42(2): 278-81.
5- Gutiérrez G, Alvarez I, Politzki R, Lomónaco M, Santos MJD, Rondelli F, et al. Natural progression of Bovine Leukemia Virus infection in Argentinean dairy cattle. Vet Microbiol. 2011; 151(3-4): 255-63.
6- Straub O, editor. Horizontal transmission studies on enzootic bovine leukosis. Ann Rech Vet. 1978.
7- Lv G, Wang J, Lian S, Wang H, Wu R. The global epidemiology of bovine leukemia virus: current trends and future implications. Animals. 2024; 14: 297.
8- Kobayashi S, Hidano A, Tsutsui T, Yamamoto T, Hayama Y, Nishida T, et al. Analysis of risk factors associated with bovine leukemia virus seropositivity within dairy and beef breeding farms in Japan: a nationwide survey. Res Vet Sci. 2014; 96(1): 47-53.
9- Radostits O, Gay C, Hinchcliff K, Constable P. Veterinary Medicine: A textbook of the diseases of cattle, sheep, pigs, goats, and horses. 10th ed. Edinburgh: Saunders Elsevier. 2007; 254-60.
10- Aida Y, Murakami H, Takahashi M, Takeshima SN. Mechanisms of pathogenesis induced by bovine leukemia virus as a model for human T-cell leukemia virus. Viruses. 2019; 11(5): 457.
11- Nekouei OA. Study of prevalence, risk factors, and lifetime impacts of infection with bovine leukemia virus in the Canadian dairy industry. 2015. [In Persian]
12- Maresca C, Costarelli S, Dettori A, Felici A, Iscaro C, Feliziani F. Enzootic bovine leukosis: report of eradication and surveillance measures in Italy over an 8-year period (2005–2012). Prev Vet Med. 2015; 119(3-4): 222-6.
13- Mohammad Rahim H, Masoud Reza Sh, Mehran A. Serological study of bovine leukemia virus (BLV) infection in cattle in Ahvaz. 2006. [In Persian]
14- Hassan M, Farhid H. Serological examination of bovine leukemia virus (BLV) infection in cattle farms of Chaharmahal and Bakhtiari Province. 2003. [In Persian]
15- Aldin Gh, Mohammad Mehdi A, Elaheh N, Mahmoud F, Mehran B. Serological study of enzootic bovine leukosis in Markazi Province. 1999.
16- Jozani J, Elaheh R, Moghadam Gh, Gholamali K. Serological and epidemiological study of bovine leukemia in Sarabi and Holstein breeds in East Azerbaijan Province. VJ. 2013; 26(1): 2-8.
17- Mehrdad P, Mohammad Reza M, Gholamali K. Serological study of bovine leukemia virus infection in dairy cows and the detection of anti-BLV antibodies in farmworkers in Shahr-e Kord region. 2008. [In Persian]
18- Murakami K, Kobayashi S, Konishi M, Kameyama K, Yamamoto T, Tsutsui T. The recent prevalence of bovine leukemia virus (BLV) infection among Japanese cattle. Vet Microbiol. 2011; 148(1): 84-8.
19- Le DT, Nguyen SV, Le Tan, Nguyen VH, Le PD, Dinh DV, et al. Detection of bovine leukemia virus in beef cattle kept in the Central Coast Regions of Vietnam. J Vet Med Sci. 2023; 85(1): 111-6.
20- Metwally S, Hamada R, Ali AO, Mahmoud HYAH, Baker NM, Mohamed AEA, et al. Detection and molecular characterization of bovine leukemia virus in beef cattle presented for slaughter in Egypt. J Vet Med Sci. 2020; 82(11): 1676-84.
21- Polat M, Ohno A, Takeshima SN, Kim J, Kikuya M, Matsumoto Y, et al. Detection and molecular characterization of bovine leukemia virus in Philippine cattle. Arch Virol. 2015; 160(1): 285-96.
22- Mousavi S, Haghparast A, Mohammadi G, Tabatabaeizadeh SE. Prevalence of bovine leukemia virus (BLV) infection in the northeast of Iran. Vet Res Forum. 2014; 5(2): 135-9. [In Persian]
23- Chacón J, Leiva R, Romero-Zuñiga JJ, Navarro L, Dolz G. Seroprevalence and detection of bovine leukosis virus in semen from breeding bulls in Costa Rica. Trop Anim Health Prod. 2023; 55(5): 343.
24- Porta NG, Suarez-Archilla G, Miotti C, Molineri AI, Alvarez I, Trono K, et al. Seroprevalence and risk factors associated with bovine Leukemia virus infection in Argentine beef cattle. Res Vet Sci. 2023; 164: 104999.
25- Huser SM, Larson RL, Taxis TM, Almaraz JM, Reif KE, Weaver B, et al. Cross-sectional study to describe bovine leukemia virus herd and within-herd ELISA prevalence and bovine leukemia virus proviral load of convenience-sampled Kansas beef cow-calf herds. Am J Vet Res. 2022; 84(2).
26- Jaimes-Dueñez J, Goyeneche-Ortiz E, Tique-Oviedo M, Ortiz-Pineda MC, Cardenas-Pinto L, Jimenez-Leaño AP, et al. Molecular frequency of bovine leukemia virus in Creole cattle of Eastern Colombia. Vet Anim Sci. 2024; 25: 100372.
27- Kazemimanesh M, Madadgar O, Steinbach F, Choudhury B, Azadmanesh K. Detection and molecular characterization of bovine leukemia virus in various regions of Iran. J Gen Virol. 2019; 100(9): 1315-27.
دوره 8، تابستان
تابستان 1404
صفحه 65-76

  • تاریخ دریافت 27 آبان 1403
  • تاریخ بازنگری 29 شهریور 1404
  • تاریخ پذیرش 30 شهریور 1404