تازه ها در میکروب شناسی دامپزشکی

تازه ها در میکروب شناسی دامپزشکی

برآورد شیوع مولکولی Coxiella burnetii در شیر خام گاو و بز منطقه سیستان با استفاده از Nested PCR

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان
1 دانشکده دامپزشکی، دانشگاه زابل، زابل، ایران
2 گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه زابل، زابل
3 گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه زابل، زابل، ایران
4 پژوهشکده زیست فناوری دانشگاه زابل، زابل، ایران
10.22034/nfvm.2026.587670.1318
چکیده
تب کیو یک بیماری مشترک مهم بین انسان و دام است که توسط کوکسیلا بورنتی ایجاد می‌شود. نشخوارکنندگان اهلی مخازن اصلی هستند و دفع باکتری از شیر، خطر انتقال به انسان دارد. این مطالعه با هدف تعیین شیوع مولکولی کوکسیلا بورنتی در شیر گاو و بز منطقه سیستان و بررسی عوامل خطر سن و گونه انجام شد.
در این مطالعه مقطعی، ۱۰۰ نمونه شیر به روش خوشه‌ای از گله‌های شهرستان‌های زابل، هامون، زهک، هیرمند و نیمروز در بهار ۱۴۰۴ جمع‌آوری شد. پس از استخراج DNA با کیت سیناکلون، ژن com1 با روش Nested PCRتکثیر شد. محصولات ۴۳۸ جفت‌بازی روی ژل‌آگارز ۱/۵ درصد الکتروفورز شدند. تحلیل آماری با SPSS نسخه ۲۷ و آزمون‌های کای مربع و دقیق فیشر انجام گرفت (سطح معنی‌داری 05/0).
از ۱۰۰ نمونه، ۴ نمونه (۴% با فاصله اطمینان ۹۵%: %9/9-%1/1) مثبت بودند. شیوع در گاوها 3/4درصد و در بزها 3/3درصد بود. بین سن دام و شیوع عفونت ارتباط معنی‌دار وجود داشت (031/0=p) و همه موارد مثبت در سن بالای ۴ سال بودند. ارتباط بین گونه دامی و عفونت معنی‌دار نبود(843/0=p).
هرچند شیوع ۴% در مقایسه با برخی مطالعات ایران پایین‌تر است، شناسایی DNA باکتری در شیر خام نشان‌دهنده حضور احتمالی عامل در منطقه است و لزوم پایش مستمر و رعایت اصول بهداشتی در مصرف شیر را خاطرنشان می‌سازد. با این حال، برای اثبات قطعی وجود باکتری و خطر انتقال، نیاز به تأیید توالی‌یابی و مطالعات تکمیلی است. مشاهده موارد مثبت فقط در دام‌های بالای ۴ سال می‌تواند نشان‌دهنده احتمال بیشتر مواجهه یا دفع در دام‌های مسن‌تر باشد.
کلیدواژه‌ها
موضوعات

عنوان مقاله English

Estimation of Molecular Prevalence of Coxiella burnetii in Raw Milk of Cattle and Goats in Sistan Region Using Nested PCR

نویسندگان English

Setia Ali molaee 1
Mehdi Rasekh 2
Ali Sarani 3
Hasan Ahmadi 4
1 Faculty of Veterinary Medicine,, University of Zabol, Zabol, Iran
2 Department of clinical sciences, faculty of veterinary medicine, university of Zabol, Zabol, Iran
3 ِDepartment of Clinical Sciences, Faculty of Veterinary Medicine, University of Zabol, Zabol
4 Biotechnology Research Institute, University of Zabol, Zabol
چکیده English

Q fever is an important zoonotic disease caused by Coxiella burnetii. Domestic ruminants are the main reservoirs, and bacterial shedding through milk poses a risk of transmission to humans. This study aimed to determine the molecular prevalence of Coxiella burnetii in milk of cattle and goats in the Sistan region and to investigate the risk factors of age and species.
In this cross-sectional study, 100 milk sampleswere collected by cluster sampling from herds in Zabol, Hamoon, Zahak, Hirmand, and Nimroz cities during spring 2025. After DNA extraction using the Sinaclon kit, the com1 gene was amplified by Nested PCR . The 438-bp products were electrophoresed on 1.5% agarose gel. Statistical analysis was performed using SPSS with chi-square and Fisher's exact tests (significance level: 0.05).
Out of 100 samples, 4 samples were positive. Prevalence was 4.3% in cattle and 3.3% in goats. There was a significant association between age and infection (P=0.031), with all positive cases observed in animals older than 4 years. No significant association was found between species and infection (P=0.843).
Although the 4% prevalence is lower than some studies in Iran, detection of bacterial DNA in raw milk indicates the possible presence of the agent in the region and highlights the need for continuous monitoring and observance of hygienic principles in milk consumption. However, for definitive proof of bacterial presence and transmission risk, sequencing confirmation are required. The observation of positive cases only in older animals may suggest a higher probability of exposure or shedding in older animals.

کلیدواژه‌ها English

Coxiella burnetii
Nested PCR
Q fever
Raw milk
Sistan
  1. Derrick EH. "Q" fever, a new fever entity: clinical features, diagnosis and laboratory investigation. Med J Aust. 1937;2:281-99.
  2. Angelakis E, Raoult D. Q fever. Vet Microbiol. 2010;140(3-4):297-309.
  3. Mutisya WM, Akoko JM, Mwatondo A, Muturi M, Nthiwa D, Abkallo HM, et al. Sero-epidemiology of Coxiella burnetii in livestock and humans in Isiolo county Kenya. PLoS Negl Trop Dis. 2025;19(10):e0013557.
  4. Toledo-Perona R, Contreras A, Gomis J, Quereda JJ, García-Galán A, Sánchez A, et al. Controlling Coxiella burnetii in naturally infected sheep, goats and cows, and public health implications: a scoping review. Front Vet Sci. 2024;11:1321553.
  5. Van Asseldonk M, Prins J, Bergevoet R. Economic assessment of Q fever in the Netherlands. Prev Vet Med. 2013;112(1-2):27-34.
  6. Fournier PE, Raoult D. Comparison of PCR and serology assays for early diagnosis of acute Q fever. J Clin Microbiol. 2003;41(11):5094-8.
  7. Meletis E, Keshavamurthy R, Singh Dhaliwal BB, Aulakh RS, Dhand N, Kostoulas P. Evaluation of the sensitivity and specificity of three diagnostic tests for Coxiella burnetii infection in cattle and buffaloes in Punjab (India) using Bayesian latent class analysis. PLoS One. 2022;17(5):e0254303.
  8. Zabihi R, Majidzadeh-A K, Morovvati A, Soleimni M. A Real-time Quantitative Loop Mediated Isothermal Amplification Assay Targeting com1 Gene of Coxiella burnetii. Journal of Advanced Biomedical Sciences. 2024;14(1):12-20.
  9. Denison AM, Thompson HA, Massung RF. IS1111 Insertion Sequences of Coxiella burnetii: Characterization and Use for Diagnostic PCR. J Clin Microbiol. 2007;45(12):3901-3909.
  10. Simeonov K, Genova-Kalou P, Todorova K. Evaluation of the Efficiency of Detection of Bacterial DNA in Milk and Tissue Samples Through PCR Targeting the Com1, sod, and Transposase IS1111 Genes of Coxiella burnetii. Acta Microbiol Bulg. 2025;41(1):45-53.
  11. Ownagh A, Mokarizadeh K, Khademi P. Epidemiology of Q Fever in Milk by Using Nested-PCR Targeting the Repetitive Elements IS1111 and COM1 Genes in Coxiella burnetii in Iran. J Hell Vet Med Soc. 2025;75(4):8155-8162.
  12. Esmaeili S, Mohabati Mobarez A, Khalili M, Mostafavi E, Moradnejad P. Molecular prevalence of Coxiella burnetii in milk in Iran: a systematic review and meta-analysis. Trop Anim Health Prod. 2019;51(6):1345-55.
  13. Nokhodian Z, Feizi A, Ataei B, Hoseini SG, Mostafavi E. Epidemiology of Q fever in Iran: A systematic review and meta-analysis for estimating serological and molecular prevalence. J Res Med Sci. 2017;22(1):121.
  14. Esmaeili S, Mohabati Mobarez A, Khalili M, Mostafavi E, Moradnejad P. Molecular prevalence of Coxiella burnetii in milk in Iran: a systematic review and meta-analysis. Tropical animal health and production. 2019 Jul 1;51(6):1345-55.
  15. Zhang G, Hotta A, Mizutani M, Ho T, Yamaguchi T, Fukushi H, et al. Direct identification of Coxiella burnetii plasmids in human sera by nested PCR. J Clin Microbiol. 1998;36(8):2210-3.
  16. Fretz R, Schaeren W, Tanner M, Baumgartner A. Screening of various foodstuffs for occurrence of Coxiella burnetii in Switzerland. Int J Food Microbiol. 2007;116(3):414-8.
  17. Enferadi A, Ownagh A, Mardani K. Molecular detection of Coxiella burnetii by nested PCR method in cattle and buffalo raw milk, Urmia region, Iran. Jentashapir J Cell Mol Biol. 2023;14(4):1-7.
  18. Shujat S, Shehzad W, Anjum AA, Hertl JA, Gröhn YT, Zahoor MY. Molecular identification of Coxiella burnetii in raw milk samples collected from farm animals in districts Kasur and Lahore of Punjab, Pakistan. PLoS One. 2024;19(6):e0301611.
  19. Muhye NA, Kadhim KS, Salih MA. Molecular detection of Coxiella burnetii in raw milk of cattle in Karbala province. J Kerbala Agric Sci. 2024;11(3):164-9.
  20. Adly M, Elshereif LM, Sayed M. Risk of Coxiella burnetii infection in Dairy Farms. J Appl Vet Sci. 2024;9(2):45-52.
  21. Jones RM, Twomey DF, Hannon S, Errington J, Pritchard GC, Sawyer J. Detection of Coxiella burnetii in placenta and abortion samples from British ruminants using real‐time PCR. Veterinary Record. 2010;167(25):965-7.
  22. Muema J, Thumbi S, Obonyo M, Wanyoike S, Nanyingi M, Osoro E, et al. Seroprevalence and factors associated with Coxiella burnetii infection in small ruminants in Baringo County, Kenya. Zoonoses Public Health. 2017;64(7):e31-43.
  23. Klaasen M, Roest HJ, van der Hoek W, Goossens B, Secka A, Stegeman A. Coxiella burnetii seroprevalence in small ruminants in The Gambia. PLoS One. 2014;9(1):e85424.
  24. Milkesa A, Rufael T, Kinfe G, Belaineh R, Bulbula A, Cho D, et al. A sero-epidemiological analysis of Coxiella burnetii infection and its risk factors in livestock from Addis Ababa, Adama, and Modjo abattoirs and pastoral areas of Oromia, Ethiopia. PLoS Negl Trop Dis. 2024;18(7):e0012287.

  • تاریخ دریافت 29 خرداد 1405
  • تاریخ بازنگری 29 تیر 1405
  • تاریخ پذیرش 29 تیر 1405